南川百合组织培养研究
核心提示：刘燕琴，胡开治， 肖波，谢贤明，刘杰
(重庆市药物种植研究所，重庆 408435)
南川百合Lilium rosthomii Diels为百合科百合属多年生草本植物，原产地为重庆南川市金佛山周围，海拔350一1 100m的山沟，溪边，林下，6-9月为开花期。
(重庆市药物种植研究所，重庆 408435)
南川百合Lilium rosthomii Diels为百合科百合属多年生草本植物，原产地为重庆南川市金佛山周围，海拔350一1 100m的山沟，溪边，林下，6-9月为开花期。
刘燕琴，胡开治， 肖波，谢贤明，刘杰
(重庆市药物种植研究所，重庆 408435)
南川百合Lilium rosthomii Diels为百合科百合属多年生草本植物，原产地为重庆南川市金佛山周围，海拔350一1 100m的山沟，溪边，林下，6-9月为开花期。其药用部分是干燥的肉质鳞片，具有养阴润肺，清心安神的功效。开花期长，花色呈红黄色、黄色，花型呈卷丹样，花被有紫色斑点，质感平滑，观赏价值极高。近年来，大量的野生资源被采挖，破坏，现存的资源已十分有限，急需进行人工保护和发展，否则将面临着灭绝的境地。但是，南川百合种子大量败育，而鳞茎的繁殖数量非常有限，这就大大阻碍了南川百合的繁殖发展。所以，运用组培方法研究南川百合的小鳞茎繁殖技术就显得十分必要。
1 材料
采摘于金佛山周围的林下，山沟的新鲜的材料。
2 方法
2．1鳞茎诱导小鳞茎的试验
取采下的新鲜鳞茎，去泥沙和腐烂的部位，在自来水下冲洗净，洗衣粉浸泡2h，流水冲洗1h，用75％的酒精浸泡30s，0．1％的升汞处理10min，再无菌水冲洗4次，最后用无菌纸吸干，以备用(以下的消毒方法相同)。
在超净工作台上，将鳞茎片切成O．5-1．0cm的小块，然后随机接种到培养瓶中，每组20瓶，每瓶一块。置于培养室内培养，培养条件：温度(25±2)℃．光照强度3000 lx，光周期为12h．d-1(下同)。
本试验以MS为基本培养基，通过附加不同浓度的NAA、6一BA、GA，设计了6组培养基。其编号、成分见表l。
2．2鳞片的不同部位诱导小鳞茎能力的试验
本试验按培养材料来源不同，设计了3个处理，将百合鳞片依照上述方法消毒后，将同一鳞片按上、中、下，3个部位切割，分别接种，每一处理50瓶，每一瓶接种3片。统一采用MS+NAA0．5mg．L-1+GA2．0mg．L-1+6一BA2．0mg．L-1培养基培养，培养条件同上。
3 结果
3．亚NAA， GA， 6一BA不同浓度配比对鳞片诱导小鳞茎的影响
培养8d后，从外植体近轴面基部出现启动迹象，形成一些淡绿色的小突起，随培养时间的延长，小突起为鳞茎样，进一步膨大成小鳞茎，为绿色带褐斑、簇生、形状规则。每块产生小鳞茎数目不一，少的1到2个，多的5到6个。培养60d进行统计，见表l。
由表l可知，无激素的MS培养基诱导作用最小，诱导率仅为18．7％，产生的小鳞茎数少。当培养基中存在NAA、6一BA、GA时，诱导作用明显增强，小鳞茎数也相应增加。当NAA固定为0．5mg．L-16一BA、GA浓度逐渐提高时，诱导率和小鳞茎数也逐渐上升。当6一BA。GA都为2．0mg．L-1时，诱导率达最高。在一定范围内，高浓度的激素促进鳞茎片的分化，但浓度过高时，促进作用减弱，甚至出现玻璃化现象。所以，选择出最适合小鳞茎诱导的培养基是MS+NAA0．5 mg．L-1+6一BA2．0mg．L-1+GA2．O mg．L-1.
3．2鳞片不同部位对小鳞茎诱导的影响
接种培养60d时统计，结果见表2。
从表2可知，同样在最佳培养基上培养，鳞片不同部位的诱导率差异极大，其中鳞片的下部诱导率最高，为92。5％；中部次之，为15．8％；上部最小，仅为5．0％。这和鳞片扦插时小鳞茎发生都集中在鳞片近轴面基部是一致的。分析原因，可能跟鳞片的内源激素的分布有关，也可能与不同部位的细胞生理化特性有关。
《中国现代中药》
(重庆市药物种植研究所，重庆 408435)
南川百合Lilium rosthomii Diels为百合科百合属多年生草本植物，原产地为重庆南川市金佛山周围，海拔350一1 100m的山沟，溪边，林下，6-9月为开花期。其药用部分是干燥的肉质鳞片，具有养阴润肺，清心安神的功效。开花期长，花色呈红黄色、黄色，花型呈卷丹样，花被有紫色斑点，质感平滑，观赏价值极高。近年来，大量的野生资源被采挖，破坏，现存的资源已十分有限，急需进行人工保护和发展，否则将面临着灭绝的境地。但是，南川百合种子大量败育，而鳞茎的繁殖数量非常有限，这就大大阻碍了南川百合的繁殖发展。所以，运用组培方法研究南川百合的小鳞茎繁殖技术就显得十分必要。
1 材料
采摘于金佛山周围的林下，山沟的新鲜的材料。
2 方法
2．1鳞茎诱导小鳞茎的试验
取采下的新鲜鳞茎，去泥沙和腐烂的部位，在自来水下冲洗净，洗衣粉浸泡2h，流水冲洗1h，用75％的酒精浸泡30s，0．1％的升汞处理10min，再无菌水冲洗4次，最后用无菌纸吸干，以备用(以下的消毒方法相同)。
在超净工作台上，将鳞茎片切成O．5-1．0cm的小块，然后随机接种到培养瓶中，每组20瓶，每瓶一块。置于培养室内培养，培养条件：温度(25±2)℃．光照强度3000 lx，光周期为12h．d-1(下同)。
本试验以MS为基本培养基，通过附加不同浓度的NAA、6一BA、GA，设计了6组培养基。其编号、成分见表l。
2．2鳞片的不同部位诱导小鳞茎能力的试验
本试验按培养材料来源不同，设计了3个处理，将百合鳞片依照上述方法消毒后，将同一鳞片按上、中、下，3个部位切割，分别接种，每一处理50瓶，每一瓶接种3片。统一采用MS+NAA0．5mg．L-1+GA2．0mg．L-1+6一BA2．0mg．L-1培养基培养，培养条件同上。
3 结果
3．亚NAA， GA， 6一BA不同浓度配比对鳞片诱导小鳞茎的影响
培养8d后，从外植体近轴面基部出现启动迹象，形成一些淡绿色的小突起，随培养时间的延长，小突起为鳞茎样，进一步膨大成小鳞茎，为绿色带褐斑、簇生、形状规则。每块产生小鳞茎数目不一，少的1到2个，多的5到6个。培养60d进行统计，见表l。
由表l可知，无激素的MS培养基诱导作用最小，诱导率仅为18．7％，产生的小鳞茎数少。当培养基中存在NAA、6一BA、GA时，诱导作用明显增强，小鳞茎数也相应增加。当NAA固定为0．5mg．L-16一BA、GA浓度逐渐提高时，诱导率和小鳞茎数也逐渐上升。当6一BA。GA都为2．0mg．L-1时，诱导率达最高。在一定范围内，高浓度的激素促进鳞茎片的分化，但浓度过高时，促进作用减弱，甚至出现玻璃化现象。所以，选择出最适合小鳞茎诱导的培养基是MS+NAA0．5 mg．L-1+6一BA2．0mg．L-1+GA2．O mg．L-1.
3．2鳞片不同部位对小鳞茎诱导的影响
接种培养60d时统计，结果见表2。
从表2可知，同样在最佳培养基上培养，鳞片不同部位的诱导率差异极大，其中鳞片的下部诱导率最高，为92。5％；中部次之，为15．8％；上部最小，仅为5．0％。这和鳞片扦插时小鳞茎发生都集中在鳞片近轴面基部是一致的。分析原因，可能跟鳞片的内源激素的分布有关，也可能与不同部位的细胞生理化特性有关。
《中国现代中药》
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